ТЕПЛИЦЫ И ПАРНИКИ


ТЕПЛИЦЫ И ПАРНИКИ

Выбор теплицы

Основные типы теплиц

Основные типы конструкций

Отдельно стоящие теплицы

Примыкающие теплицы

Парники

Теплые и холодные парники

ВЫБОР МЕСТА ДЛЯ ТЕПЛИЦЫ,
ЕЕ РАЗМЕРА И
ВНУТРЕННЕЙ ПЛАНИРОВКИ

Выбор места для теплицы

Определение размеров теплицы

Планировка помещения теплицы

Конструкция входной двери

МИКРОКЛИМАТ В ТЕПЛИЦЕ
И КОНТРОЛЬ ЗА НИМ

Вода в теплице

Освещение и электричество в теплице

Системы охлаждения, обогрева и вентилирования

Контроль за микроклиматом в теплице летом

Управление микроклиматом в зимнее время

Гидропоника

Инсектициды в теплице

СТРОИТЕЛЬНЫЕ МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ ТЕПЛИЦЫ

Дерево как строительный материал

Обшивка теплицы

Внешняя обшивка теплицы

Другие материалы для каркаса теплицы

Теплоизоляция теплицы

Гидроизоляция теплицы

Двери теплицы

Альтернативные строительные материалы

Покраска теплицы

ПОКРЫТИЕ ТЕПЛИЦЫ

Прохождение света

Материалы покрытий теплицы

Герметики и герметизирующие прокладки

ФУНДАМЕНТ И ПОЛ ТЕПЛИЦЫ

Типы фундаментов

Типы полов

Изготовление бетонного фундамента и плиты

Сооружение блочного фундамента

Сооружение фундамента сухой кладки

Сооружение кирпичного фундамента

Сооружение каменного фундамента

Сооружение деревянного фундамента

МЕТОДЫ СТРОИТЕЛЬСТВА

Сооружение сборной теплицы

Сооружение самодельной теплицы

Методы строительства с использованием стандартных пиломатериалов

Конструкционные детали теплицы

Установка покрытия

ЭЛЕКТРИЧЕСТВО, САНТЕХНИКА, ОБОГРЕВ

Монтаж электрической сети

Монтаж водопровода

Установка системы обогрева

ПРИНАДЛЕЖНОСТИ ДЛЯ ТЕПЛИЦ

Стеллажи для растений

Полки и грядки

Инструменты и оборудование

Камера для проращивания семян

Стеллаж для выращивания рассады

Стол для пересаживания растений

Места для хранения

Рабочая одежда

Средства борьбы с насекомыми

ПРОЕКТЫ ТЕПЛИЦ

Традиционная теплица

Утепленная теплица

Теплица с наклонными стенами

Теплица со стрельчатыми арками

Примыкающая теплица

Теплица на сваях или на помосте

Арочная или туннелеобразная теплица

Оконная тепличка

Теплица-кладовая

Универсальный парник

Стол для пересаживания растений

Фузариоз огурцов в теплице фото и их лечение


причины заболевания, как бороться, фото – Сад и огород своими руками

Фузариозное увядание огурцов – опасная инфекция, способная за короткий срок погубить растения на большой площади. Возбудитель болезни устойчив ко многим фунгицидам. Поэтому в запущенном случае лечение часто не приводит к желаемому результату. Борьба с фузариозом эффективна на начальной стадии развития болезни. В этот период для оздоровления огурцов используют биопрепараты, химические и народные средства.

Описание фузариозного увядания

Фузариоз относят к распространенным заболеваниям инфекционного характера. Болезнь одинаково часто поражает дикорастущие и культурные растения на всех стадиях вегетации. Чаще фузариозным увяданием страдают овощи с ослабленным иммунитетом, недавно перенесшие пересадку на новое место. После заражения у растений страдает сосудистая система. Корни не могут впитывать влагу и полезные вещества, начинаются гнилостные процессы. В результате куст высыхает и погибает.

Чаще фузариозным увяданием страдают растения, высаженные в теплицах или парниках. Возбудителем фузариоза огурцов является грибок Fusarium oxysporum. Это гриб несовершенного типа, паразитирующий на многих овощных культурах. При неблагоприятных условиях он уходит в почву и сохраняется там в виде мицелия в течение трех лет.

Обычно патоген проникает в растительный организм через корневую систему. Он поражает сосуды и закупоривает их. Грибок выделяет токсичные вещества, распространяющиеся по сосудам по всем органам растения. В результате развивается системное нарушение питания растительных тканей. Листья и стебли теряют упругость и постепенно увядают.

Реже фрагменты мицелия сохраняются на семенах. Тогда разрастание грибка идет вместе с развитием растения. Семена, зараженные фузариозом, часто не прорастают. Давшие всходы, очень быстро погибают. У молодых кустов начинается гниение корневой системы. Нижняя часть стеблей истончается и приобретает темный оттенок.

Важно!

Заражение фузариумом происходит на любой стадии вегетации. В первое время болезнь развивается без внешних признаков. Грибок развивается при температуре воздуха от +18 до +27 градусов и влажности, превышающей 85%.

Причины развития фузариоза

Грибок проникает на садовый участок с зараженными семенами, частицами почвы или водой, используемой для полива. Но основными причинами инфицирования являются ошибки овощевода. К ним относят отказ от обеззараживания семян и грунта перед посевом.

Затем инфекция развивается под воздействием благоприятных факторов, создающих хорошие условия для разрастания грибницы:

  • резких перепадов температуры воздуха в течение суток;
  • обедненной почвы;
  • избытка влаги в грунте, образования конденсата на стенках теплицы или парника, полива холодной водой;
  • повышенной кислотности грунта;
  • выращивания огурцов на тяжелой почве;
  • избыточного содержания азота;
  • загущенной посадки, нехватки солнечного света;
  • повреждений корней;
  • нападения вредителей;
  • нарушения севооборота.

Читайте также!

Признаки фузариозного увядания

К основным симптомам поражения огуречных кустов грибком Фузариумом относят:

  1. Изменение оттенка листьев. На больных кустах ботва приобретает коричневую окраску. Листья покрываются желтоватыми пятнами, постепенно увеличивающимися в размерах.
  2. Деформация листовых пластин развивается при отсутствии лечения. Края постепенно засыхают и сворачиваются в трубочку.
  3. Образование темных полосок на стеблях. Затем они трансформируются в трещины с розоватым налетом по краям. Внутри развиваются споры грибка, которые потом разносит ветер на другие растения.
  4. Потемнение корневой шейки на начальном этапе развития болезни. Со временем ткани становятся хрупкими, начинается гниение.
  5. Деформация цветоносов развивается на последней стадии заболевания. После заражения развитие цветков и завязей останавливается, они деформируются и опадают.

Симптомы фузариоза очень похожи на другое опасное заболевание – вертициллезное увядание огурцов. Болезнь чаще проявляет себя в теплом южном климате, но и в других регионах возможны вспышки. У молодых растений, зараженных вертициллезом, ветки желтеют и высыхают. У взрослых листва покрывается мелкими желтыми пятнами, затем сохнет. Главным отличием вертициллеза от фузариоза является проявление признаков болезни не на всем растении, а на 1-2 ветках.

Лечение фузариозного увядания огурцов

Лечить фузариоз не просто. Борьбу осложняет скрытый характер течения болезни в первые дни после заражения. Поэтому часто инфекцию замечают только после полного поражения грибком всех частей растения. Чтобы бороться с фузариозным увяданием, используют разные средства.

Биопрепараты

Самый лучший результат в борьбе с фузариозом дает использование на зараженных растениях биологических препаратов. Наиболее известные средства:

  1. Биологический препарат «Триходермин» в продаже встречается в виде гранул. Их растворяют в подогретой воде. Раствор используют для опрыскивания кустов и полива почвы. На одно зараженное растение уходит до 1 л жидкости.
  2. Препарат в виде порошка «Фитоспорин» также используют для обработки кустов в виде водного раствора. Опрыскивание проводят 4 раза с интервалом в 7 дней. Достоинством средства является его длительный срок годности. Порошок сохраняет свою эффективность в течение 4 лет.
  3. Средство «Витарос» используют для орошения больных растений. В его состав входят вещества, уничтожающие грибок Фузариум и препятствующие его распространению на другие растения.

Важно!

Биологические средства, кроме лечения, эффективно действуют в качестве средств профилактики заражения. Поэтому их применяют для опрыскивания растений на протяжении всего периода вегетации от посева семян и прорастания всходов.

Химические препараты

При появлении признаков фузариозного увядания на молодых растениях, еще не начавших цвести или плодоносить, эффективно использование сильнодействующих химических средств. Чаще остальных для устранения болезни применяют следующие препараты:

  1. Фунгицид «Максим» оказывает контактное действие. Жидкий концентрат смешивают с чистой водой в соотношении 1:10 для приготовления рабочего раствора. Опрыскивания кустов проводят каждые 2-3 дня. Средство эффективно уничтожает грибок на огурцах и картофеле.
  2. Препарат «ФУндазол» – эффективный фунгицид. Его применяют для лечения и предупреждения фузариозного увядания. Раствор смешивают из 200 мл концентрата и 10 л чистой воды. Полученным объемом жидкости обрабатывают от 10 до 15 взрослых растений.
  3. Средство «Глиокладин» – фунгицид, устраняющий грибковые болезни. Для опрыскивания растений 150 мл препарата растворяют в 7 л воды.

Читайте также!

Химические препараты токсичны. Поэтому обработку растений проводят со всеми мерами предосторожности. Перед началом работ обязательно надевают защитный костюм. Лицо закрывают маской или очками и респиратором. Руки защищают резиновыми перчатками. Во время работы не принимают пищу и напитки, не курят. После опрыскивания химикатами плоды с обработанных растений употребляют в пищу не раньше чем через месяц. Это время необходимо для выведения из растений токсинов.

Народные средства

Не все огородники признают современные методы лечения болезней огурцов безопасными и эффективными. Некоторые предпочитают защищать растения при помощи проверенных народных методов. Нетрадиционные способы лечения эффективны для предупреждения заражения и на начальной стадии развития болезни.

Эффективные рецепты против фузариозного увядания:

  1. Молочно-мыльный раствор подойдет для устранения грибка Фузариум и других инфекций. Рабочий раствор готовят из 1 л молока, 20 г стружки хозяйственного мыла и 30 капель йода. Приготовленным средством опрыскивают стебли и листву огуречных кустов каждые 10 суток.
  2. Лечебный раствор на основе древесной золы устраняет признаки фузариоза в течение 15-20 дней. Для его приготовления смешивают 500 г золы с 10 л воды. Оставляют настояться в течение 3 часов. Затем добавляют 100 мл жидкого мыла или шампуня. Жидкостью опрыскивают кусты 1 раз в 7 дней.
  3. Отвар из шелухи лука подходит для обработки огуречных кустов от фузариоза и других инфекционных заболеваний. Его готовят, прокипятив 4 стакана луковых чешуек с 10 л воды в течение 20 минут. Затем жидкость оставляют остыть в закрытой емкости. После процеживания средство разбавляют таким же количеством воды и опрыскивают кусты.

Для обработки тепличных растений используют следующие средства:

  1. Раствор молочной сыворотки готовят, разбавляя ее водой в соотношении 1:7. Затем смесь подогревают до температуры +25 градусов и опрыскивают ее кусты.
  2. Содовый раствор способствует устранению гнилостных процессов. Его готовят, смешивая 10 л теплой воды и 75 г натрия двууглекислого. Жидкостью обрабатывают кусты каждые 3-4 дня в период вегетации.

Устойчивые к фузариозу сорта огурцов

Из-за особенностей фузариозного увядания эффективность его лечения не всегда высокая. На ранней стадии болезнь почти незаметна. Поэтому ее распознают слишком поздно, чтобы уничтожить на начальном этапе развития.

Чтобы не тратить силы на борьбу с фузариозным увяданием и сохранить урожай, многие овощеводы выращивают сорта с высокой устойчивостью к возбудителю грибковой инфекции. Лучше всего противостоят патогену гибридные разновидности, семена которых имеют маркировку на упаковке «F1»:

  1. «Вокал F1» – партенокарпический, высокоурожайный гибрид, имеющий универсальное назначение. Он демонстрирует высокую устойчивость к грибным болезням, высокому уровню влажности, недостатку света и колебаниям температуры.
  2. «Рафаэль F1» — гибрид самоопыляемого типа. Высокорослое растение с хорошей устойчивостью к корневой гнили и другим инфекциям. Он дает гладкие плоды цилиндрической формы с хорошим вкусом.
  3. Сорт «Обской F1» – гибрид, образующий кусты средних размеров. Он устойчив к фузариозному увяданию, ложной мучнистой росе, бактериозу. Растение хорошо выдерживает перепады температуры, дает плоды с хорошим вкусом.
  4. Среднеранний сорт «Дворянский F1» – гибрид опыляемого типа с ранним цветением. Он устойчив ко многим вирусным и грибковым инфекциям.

Профилактика

Из-за трудностей распознавания и лечения фузариоза основное внимание овощеводы уделяют предупреждению болезни. Перед посевом семян на рассаду и высадкой молодых кустов в открытый грунт проводят дезинфекцию почвы. Грунт проливают кипятком, горячим раствором перманганата калия. В теплицах и парниках практикуют снятие верхнего слоя и замену его новым.

Для посева используют здоровые семена, приобретенные у проверенных производителей. Обязательно проводят обеззараживание семенного материала замачиванием в растворе фунгицидного препарата. Растения высаживают с учетом требований севооборота, возвращая на прежний участок только через 3-4 года.

Важно!

На всех этапах огородных работ регулярно стерилизуют инструменты и рабочую одежду, чтобы не допустить возможного распространения инфекции.

Чтобы не пропустить первые признаки заболевания, регулярно осматривают растения. Сбор зеленцов проводят каждые 2-3 дня. Иначе перезревшие плоды забирают на свое развитие слишком много полезных веществ и истощают растение.

Для поддержания растений регулярно проводят подкормки огурцов органикой и минеральными удобрениями. Обработку кустов выполняют по установленному графику. Растворы готовят с учетом рекомендуемой концентрации полезных микроэлементов.

При выращивании огурцов в теплице или парнике соблюдают температурный режим, защищают растения от сквозняка. Для полива используют только теплую, отстоянную воду. Орошения проводят с учетом погодных условий. В жару кусты поливают чаще. В холодное и дождливое лето частоту орошений уменьшают.

Чтобы иммунитет растений не снижался, своевременно уничтожают вредителей. При обнаружении больных кустов их выкапывают и сжигают для защиты соседних посадок от заражения. При выращивании огурцов отдают предпочтение сортам, устойчивым к фузариозу.

Фузариозное увядание часто становится причиной снижения урожайности огурцов. Но при соблюдении правил агротехники и своевременной профилактике можно избежать заражения. Из-за трудностей лечения и опасности болезни рекомендуется сразу избавляться от зараженных кустов и по возможности использовать сильнодействующие препараты для борьбы с ней.

 

Фузариоз стебля и корневая гниль тепличного огурца

Стебель и корень фузариума Гниль тепличного огурца



Содержание

Введение

Это заболевание, вызываемое грибком Fusarium oxysporum f.sp. radicis-cucumerinum , впервые был замечен в Греции и Нидерландах.Сообщается в Британской Колумбии, Канада в 1994 году, а затем в Онтарио в 2000 году с потерями 10% и 25% -35% соответственно.

Симптомы

Симптомы включают увядание растений на стадии плодоношения и в жаркую погоду. Желтоватое или желтоватое изменение цвета внешние ткани кроны растений, однако белые, пушистые известный как мицелий гриба, в настоящее время не проявляется.Грибок колонизирует стебель огурца за пределами видимых симптомов болезни. На поздних стадиях болезни наблюдается прогрессирующая колонизация вверх. стебля. Продольный разрез коронки показывает пробой корковых тканей (рис. 1) и вторичное инфицирование бактериями следующим образом.

Рисунок 1. Жгутовый стержень с окраской светлого лосося снаружи.Обратите внимание на разбивку внутренних тканей и белый хлопчатобумажный рост грибковых мицелий на поверхности стебля.

Рисунок 2. Примечание. основа из огурца желтовато-оранжевого цвета на стебле за счет мицелия Fusarium oxysporum f.sp. radicis-cucumerinum .

Сильно пораженные растения имеют жилистый стебель с легким лососем. или розовато-оранжевые споровые массы и белые грибковые, похожие на хлопья наросты на внешней стороне стержня (Рисунок 2.). Эти растения становятся коричневыми и умирают, особенно при большом количестве фруктов и жаркой погоде. Корни пораженных растений остаются твердыми в отличие от корневой гнили пития, где корни полностью загнивают.

Огурцы и дыня очень восприимчивы. Арбуз тоже чувствительны, тогда как тыква и кабачки проявляют только легкие симптомы. Перец и помидор не проявляют симптомов болезни.

Эпидемиология

Грибок может выживать в растительных остатках и в почве в течение многих лет. как хламидоспоры (т.е. зимующие споры) и на более короткие периоды на тепличных конструкциях между культурами как еще один вид спор известный как конидия. Он может распространяться в рециркуляционных системах через оросительные линии. Заражение через кончики корней и участки ран при пересадке - обычное дело. Грибок также может колонизировать минеральную вату. блоки и могут распространяться через корневой контакт в плитах из минеральной ваты. прививочный материал Раннее начало вегетации важно для развития болезни.Хотя на пораженной ткани стебля образуется множество спор, они плохо разлетаются по воздуху (всего 1-2 м) из-за слизистый материал, в котором они содержатся. Водное рассеяние является более вероятным средством распространения в теплице и может вызвать заражение среды выращивания. Другие источники распространения в теплицы включают перемещение зараженных растений, использование зараженных инструменты для обрезки, или через одежду рабочих, которые контакт с пораженными стеблями растений.

Заражение семян Fusarium oxysporum f.sp. Radicis-cucumerinum есть подозрение, но еще не было продемонстрировано. Однако у него есть сообщалось о Fusarium oxysporum f.sp. radicis-lycopersici, аналогичный возбудитель томата. Температура около 20 ° C благоприятствует заражение молодых растений, особенно в первые 4 недели, если растения испытывают физиологический стресс. Болезнь не развивается при 32 ° C, тогда как более старые растения менее восприимчивы.

Контроль

Применяйте комплексный подход к борьбе с болезнями в теплице. Это включает меры сопротивления, профилактики и санитарии.

Сопротивление

Список восприимчивых и устойчивых растений можно найти у дилеров. Сорта.

Профилактика

Исследования показывают, что обработка семян может снизить низкий уровень переносимых семенами инфекция, если она присутствует.См. OMAFRA Публикация 363: Овощи Производственные рекомендации по доступным обработкам семян.

Перед посевом и посадкой растений на теплица, поскольку заражение, вероятно, происходит в течение первых 4 недель и более старые растения менее восприимчивы. Проверяйте рассаду на раннюю смерть и выбросьте эти растения, а также здоровые растения вокруг пораженные в лотках для рассады.Раннее обнаружение болезнь увеличивает шансы на искоренение. Проверить трансплантаты осторожно при таких симптомах, как увядание или стеблевая инфекция. Использовать только растения, которые кажутся здоровыми после пересадки. Принесите подозрительные растения к специалисту или в клинику болезней растений для диагностики. Убедитесь, что все рабочие осведомлены о симптомах болезни и проинструктированы предупредить руководство при первых признаках этих симптомов.отождествлять больные растения заклеить цветной лентой для предупреждения рабочих. Убедитесь, что рабочие осведомлены о распространении спор, если они касаются пораженных стеблей или среды выращивания пораженных растений руками или одеждой. Работайте на пораженных участках теплицы в последнюю очередь, после работы в районы, где болезнь не наблюдалась. Не перемещайте тележки и ящики из зараженных мест в незараженные.Не подпускайте посетителей пораженных участков.

Санитария

Выбросить плиты, пакеты, кубики или другие среды, в которых были заражены растения. росла в них ранее. Не пересаживайте на тот же материал если он не был стерилизован паром. Удалите весь мусор с пораженные теплицы и струны от пораженных растений. Удалить зараженных растения тщательно следят за тем, чтобы не допустить контакта пораженных участков растений с соседними растениями и поместите их в полиэтиленовый пакет.Выбросьте больной материал вдали от теплиц. чтобы гарантировать, что этот посевной материал грибка не попадет обратно в теплицы рабочими, ветром, на шинах и насекомыми, такими как берег мухи и грибные комары. Дополнительно удалите 1-2 растения на по обе стороны от растений, проявляющих симптомы, и поместить их в мусор мешки. Если материал утилизируется в куче отбраковки, убедитесь, что что куча отбраковки находится вдали от теплицы на возможно.Накройте кучу отбраковки, чтобы предотвратить попадание насекомых, таких как прибрежные мухи и грибные комары от разноса спор грибка обратно в теплицы. Кроме того, инфицированные остатки растений можно сжечь или отправить в свалка. Его нельзя оставлять в открытом грунте или включать в почву на полях, особенно если другие уязвимые поля будут посажены такие культуры, как мускусная дыня, арбуз, тыква или кабачки там позже.После сбора урожая примените соответствующие процедуры дезинфекции. в теплицах, где находились пораженные растения.

Поддерживайте ванночки для ног с достаточным количеством свежего дезинфицирующего средства у каждого входа в теплицу. Очистить инструменты обрезки, используемые для обработки зараженных растения путем погружения в дезинфицирующее средство после каждого контакта с пораженными растение. После выхода из пораженных участков попросите рабочих, особенно тех, кто соприкасается с больным растительным материалом, выбросить одноразовые перчатки и ботинки в надлежащем порядке, обувь / ботинки оставить для дезинфекции, а спецодежду оставьте для стирки и дезинфекции.

Капельные линии и капельницы пораженных растений должны быть заменены или очищены путем удаления отложений кислотой с последующим используя коммерческое дезинфицирующее средство, а затем промыть водой. Споры могут выжить в линиях или рециркуляционных системах, поэтому дезинфицируйте поливочные линии в конце сезона урожая. Промойте линии и резервуары с дезинфицирующим средством несколько раз в течение 24 часов.После этого промойте пресной водой.

Биологический

См. OMAFRA Публикация 371: Выращивание тепличных овощей для доступных продуктов.

Благодарности

Обзор этого информационного бюллетеня Джиллиан Фергюсон, OMAFRA с благодарностью признал. Настоящий информационный бюллетень подготовил Раймонд Черкаускас, Сельское хозяйство и агропродовольствие Канада, Теплицы и переработка Центр исследования сельскохозяйственных культур, Харроу, Онтарио.

Ссылки по теме

,

границ | Применение силиката натрия повышает устойчивость огурцов к фузариозному увяданию и изменяет сообщества почвенных микробов

Введение

Кремний (Si) является вторым по распространенности минеральным элементом в почве и составляет около 28% земной коры (Ye et al., 2013). Хотя функции Si в физиологии растений и биохимических аспектах давно обсуждаются, благотворное влияние этого элемента на рост, развитие растений и устойчивость к абиотическим и биотическим стрессам хорошо задокументировано у многих видов растений (Ma, 2004; Reynolds и другие., 2016; Лю и др., 2017; Wang et al., 2017). Например, экзогенные силикаты (например, силикат калия, силикат кальция и силикат натрия) могут повышать устойчивость растений к таким заболеваниям, как мучнистая роса и фузариозное увядание огурцов ( Cucumis sativus L.) (Liang et al., 2005; Safari et al., 2012), фитофтороз риса ( Oryza sativa L.) (Ye et al., 2013; Zhang et al., 2013) и мучнистая роса пшеницы ( Triticum aestivum L.) ( Guével et al., 2007).

Было предложено несколько механизмов, объясняющих повышенную устойчивость растений экзогенными силикатами. Во-первых, полимеризация Si под кутикулой и в клеточных стенках увеличивает физический барьер для патогенов (Ye et al., 2013; Liang et al., 2015; Debona et al., 2017). Во-вторых, Si играет метаболическую роль во взаимодействии хозяина и патогена, усиливая активность защитных ферментов растений, что приводит к увеличению накопления защитных соединений, таких как фенольные соединения и фитоалексины, для повышения устойчивости растений к биотическим и абиотическим стрессам (Ma, 2004; Reynolds et al. и др., 2016). В-третьих, Si может вызывать системную резистентность у растений (Debona et al., 2017). Например, применение силикатов (силикат калия или коллоидный диоксид кремния) в корнях индуцировало системную резистентность у риса ( Oryza sativa L.) и томатов ( Solanum lycopersicum L.) (Ye et al., 2013; Kurabachew and Wydra , 2014).

Сообщество почвенных микробов является одним из основных компонентов, определяющих здоровье почвы, и считается основным двигателем защиты растений от подземных патогенов (Mendes et al., 2013). Полезные для растений микроорганизмы (например, некоторые виды в Pseudomonas и Streptomyces spp.) Могут защищать растения напрямую, подавляя патогены растений, и косвенно, индуцируя системную устойчивость растений (Zhao et al., 2012; Pieterse et al., 2014 ). Индуцированная защита растений регулируется сильно взаимосвязанными сигнальными сетями, в которых растительные гормоны, такие как жасмоновая кислота, салициловая кислота и этилен, являются ключевыми регуляторами (Pieterse et al., 2014). Активация сигнального пути жасмоновой кислоты изменила микробные сообщества ризосферы и вызвала сдвиги в численности бактерий с потенциалом подавления патогенов растений (Carvalhais et al., 2013). Wang et al. (2013) показали, что силикат калия изменяет структуру и активность почвенного микробного сообщества. Однако остается неясным, играют ли изменения в микробных сообществах почвы, вызванные экзогенным силикатом, некоторую роль в повышении устойчивости растений к патогенам.

Минеральные питательные вещества могут напрямую влиять на физиологический статус патогенов растений и их антагонистов (Qin and Tian, ​​2005). Например, цинк и медь подавляли патогенный гриб растений Fusarium oxysporum f.зр. ciceri для производства фузариновой кислоты, фитотоксина; но способствовал развитию Pseudomonas fluorescens 4-92, антагониста этого патогена, с образованием 2,4-диацетилфлороглюцина, вторичного метаболита с противогрибковой активностью (Saikia et al., 2009). Испытания in vitro также показали, что силикат натрия ингибирует рост мицелия некоторых грибов, таких как Alternaria alternata , Fusarium semitectum и Trichothecium roseum (Bi et al., 2006). Следовательно, существует вероятность того, что экзогенные силикаты могут защищать растения посредством ингибирования патогенов растений и / или стимуляции полезных для растений микроорганизмов в почве.

Фузариозное увядание огурца, вызванное почвенным патогеном F. oxysporum f.sp. cucumerinum (FOC) - серьезное сосудистое заболевание во всем мире (Zhou and Wu, 2009). Предыдущие исследования показали, что силикат натрия повышает устойчивость огурцов к фузариозному увяданию, а силикат калия изменяет микробные сообщества почвы (Safari et al., 2012; Wang et al., 2013). Мы предположили, что (1) изменения в почвенной биоте, вызванные силикатом натрия, повышают устойчивость проростков огурца к фузариозному увяданию, и (2) силикат натрия может ингибировать FOC, одновременно стимулируя его антагонист. Цели этого исследования заключались в следующем: (1) выяснить реакцию почвенных микробных сообществ на экзогенный силикат натрия, (2) оценить, оказывают ли изменения в микробных сообществах почвы, вызванные силикатом натрия, обратную связь на устойчивость проростков огурца к фузариозному увяданию, и (3) оценить влияние экзогенного силиката натрия на FOC и Streptomyces DHV3-2, бактерию, антагонистическую по отношению к FOC, как in vitro , так и в почве.

Материалы и методы

Эксперимент с горшком

Почвы, использованные в данном исследовании, были собраны из верхнего слоя почвы (0–15 см) открытого поля на экспериментальной станции Северо-Восточного сельскохозяйственного университета, Харбин, Китай (45 ° 41 ′ с.ш., 126 ° 37 ′ в.д.). Почва - чернозем (Mollisol) со структурой супеси: органическое вещество почвы 74 г кг -1 ; доступный N, 101 мг кг -1 ; Olsen P, 48 мг кг -1 ; в наличии К, 124 мг кг -1 ; доступный Si, 32 мг кг -1 ; pH (1: 2.5, в / в), 5,85; ЭК (1: 2,5, мас. / Об.), 0,41 мСм см -1 . В этом исследовании использовали аналитически чистый силикат натрия (Na 2 SiO 3 9H 2 O), приобретенный у Basifu, Co. Ltd., Тяньцзинь, Китай.

Семена огурца (сорт «Jinyan 4», чувствительный к FOC) вымачивали в воде при 55 ° C в течение 30 минут, а затем проращивали в песке в камере для выращивания при 26 ° C. После появления всходов рассаду огурца с двумя семядолями пересаживали в горшки (диаметром 16 см, высотой 14 см), содержащие 1 кг сухой массы почвы, и выдерживали в теплице (28 ° C днем ​​/ 18 ° C ночью, относительной влажностью 60 ° C). –80%, 16 ч света / 8 ч темноты).В каждом горшке было одно растение. Затем горшки с рассадой огурцов и горшки без рассады огурцов (голая почва) обрабатывали питательным раствором с 2,0 мМ силиката натрия или без него. Применяемая концентрация силиката натрия в почве была основана на результатах Liang et al. (2005). Всего в этом эксперименте было четыре обработки: почва, выращенная на огурцах, обработанная силикатом натрия (CSi) или без силиката натрия (C), голая почва, обработанная силикатом натрия (BSi) или без силиката натрия (B).Используемый питательный раствор содержал макроэлементы (в мМ): 1,0 Ca (NO 3 ) 2 , 0,9 KNO 3 , 0,3 MgSO 4 и 0,1 KH 2 PO 4 ; Буферный ЭДТА раствор микронутриентов (в мкМ): 2,5 MnSO 4 , 1,0 CuSO 4 , 10 ZnSO 4 , 1,0 CoSO 4 , 1,0 NiCl 2 и 115,5 EDTANa 2 ; и другие микронутриенты (в мкМ): 35 NaCl, 10 H 3 BO 3 , 0,05 Na 2 MoO 4 .Добавляли силикат натрия до достижения концентрации силиката натрия 2,0 мМ. PH питательного раствора, забуференного 0,1 мМ HEPES, доводили до 7,5 с помощью 0,05 мМ NaOH. Для обработок силикатом натрия (CSi и BSi) еженедельно добавляли 100 мл указанного выше питательного раствора с 2,0 мМ силиката натрия. Для обработок без силиката натрия (C и B) еженедельно добавляли 100 мл указанного выше питательного раствора без 2,0 мМ силиката натрия.

Эксперимент был проведен по схеме рандомизированного блока с тремя повторными блоками.В каждом блоке было 30 горшков на обработку. Во время эксперимента горшок взвешивали, чтобы обеспечить поддержание содержания воды на уровне примерно 60% от его водоудерживающей способности, и положение этих горшков на каждом участке случайным образом менялось каждые 2 дня.

Измерение сухой биомассы растений и отбор проб почвы

Через 10, 20 и 30 дней после первого применения силиката натрия собирали по три саженца огурцов в каждой тройной повторности каждой обработки. Сухой вес растений измеряли после сушки в печи при 70 ° C до постоянного веса.

Образцы почвы были собраны через 30 дней после первого применения силиката натрия, как описано ранее (Zhou and Wu, 2012). Образцы из девяти горшков на повтор каждой обработки смешивали для получения композитного образца. Часть свежих отобранных почв была использована для экспериментов с обратной связью растение-почва; другую часть хранили при -80 ° C для выделения ДНК.

Экстракция ДНК и анализ численности бактериальных и грибковых сообществ с помощью ПЦР в реальном времени

Общая ДНК почвы была выделена из 0.28 г образцов почвы с использованием набора для выделения ДНК PowerSoil (MO BIO Laboratories, Карлсбад, Калифорния, США) в соответствии с протоколом производителя.

Численность почвенных бактерий и грибов оценивалась путем измерения количества бактериального гена 16S рРНК и количества участков внутреннего транскрибируемого спейсера (ITS) грибов с наборами праймеров 338F / 518R (Muyzer et al., 1993) и ITS1F / ITS4 (White et al., 1990; Gardes and Bruns, 1993) соответственно. Анализ ПЦР в реальном времени (кПЦР) на основе SYBR Green проводили с помощью системы ПЦР в реальном времени IQ5 (Bio-Rad Lab, Hercules, Калифорния, США), как описано ранее (Zhou et al., 2017). Стандартные кривые были созданы с помощью серии 10-кратных разведений плазмид, содержащих ген 16S рРНК или ITS-область. Значение порогового цикла (Ct), полученное для каждого образца, сравнивали со стандартной кривой, чтобы определить начальное количество копий целевого гена.

Illumina Miseq Секвенирование бактериальных и грибковых сообществ

Состав почвенных бактериальных и грибных сообществ анализировали с помощью секвенирования Illumina MiSeq. Наборы праймеров 515F / 907R и ITS1F / ITS2 были использованы для бактериального и грибкового сообществ соответственно, как описано ранее (Ren et al., 2015; Чжоу и др., 2017). Каждый образец амплифицировали в трех экземплярах, и ампликоны очищали, количественно определяли и пиросеквенировали с использованием титановой платформы MiSeq Genome Sequencer PE300 (Majorbio Bio-Pharm Technology, Co. Ltd., Шанхай, Китай).

файлов Raw FASTQ были демультиплексированы, отфильтрованы по качеству и обработаны с использованием QIIME (версия 1.17) (Caporaso et al., 2010), а парные чтения были объединены с помощью FLASH (Magoč and Salzberg, 2011). Затем соединенные пары подвергались качественной фильтрации с несколькими этапами, такими как удаление последовательностей <220 п.н. с неоднозначным основанием «N» и средним показателем качества основания <20.Операционные таксономические единицы (OTU) с 97% отсечением сходства были сгруппированы с помощью UPARES (версия 7.1) (Edgar, 2013) и аннотированы с помощью BLAST в базах данных SILVA (бактерии) и Unite (грибы), а химерные последовательности были идентифицированы и удалены с помощью USEARCH в QIIME (Caporaso et al., 2010). После фильтрации считываний с помощью базального контроля качества и удаления одноэлементных OTU всего было получено 645 943 качественных бактериальных последовательностей и 761 849 качественных грибковых последовательностей. Средняя длина чтения составила 397 и 252 п.н. для гена 16S рРНК и ITS-области соответственно.Набор данных был депонирован в NCBI-Sequence Read Archive с регистрационным номером SRP118555.

Инокуляция FOC и Измерение индекса болезни фузариозного увядания

Штамм FOC был выделен и идентифицирован из растения огурца, увядшего фузариозом, выращенного в теплице. FOC выращивали на среде картофельного агара с декстрозой (PDA) и конидии получали, как описано ранее (Zhou and Wu, 2009). На стадии двух листьев сеянцы огурцов, которые были приготовлены, как описано в эксперименте с горшком, инокулировали суспензией FOC 2 × 10 8 конидий -1 мл в соответствии с методом Fortunato et al.(2014). Сначала проростки огурцов осторожно извлекали из почвы, отрезали корни стерилизованными ножницами, а затем погружали в конидиальную суспензию ФОС на 20 мин. В качестве контроля использовали проростки, погруженные в стерилизованную воду. Затем саженцы огурцов были возвращены в исходные горшки. Наконец, 20 мл конидиальной суспензии FOC залили на поверхность почвы, содержащую обработанные FOC проростки на горшок. Каждая обработка содержала 15 проростков и проводилась в трех повторностях.

Все проростки огурцов собирали через 15 дней после инокуляции FOC.Корни промывали деионизированной водой для удаления остатков почвы, а затем обрабатывали 2% раствором аскорбиновой кислоты в течение 10 мин, чтобы избежать окисления тканей. Тяжесть заболевания регистрировалась с использованием шкалы, содержащей шесть баллов, как было предложено Liu et al. (1995).

Эксперимент с обратной связью между растениями и почвой

Влияние обратной связи почвенной биоты на рост проростков огурцов и устойчивость к ФОС оценивали путем добавления метода посева в почву, как описано ранее (Brinkman et al., 2010; Zhou et al., 2017, 2018). Стерилизованные почвы, собранные в открытом поле, использовали в качестве фоновых почв, а почвы, обработанные силикатом натрия или без него из горшочного эксперимента, использовали в качестве инокулята. Отношение посевного материала к фоновой почве составляло 6% (масса / масса). Вкратце, почвы, собранные в открытом грунте, стерилизовали с помощью трех циклов автоклавирования (121 ° C, 30 мин) и охлаждения до комнатной температуры. Затем эти фоновые почвы смешивали с разными инокулятами. Было четыре обработки: стерилизованная почва открытого грунта, смешанная с (1) голой почвой, обработанной без силиката натрия, (2) голой почвой, обработанной силикатом натрия, (3) почвой, обработанной огурцами, обработанной без силиката натрия, и (4) выращенной огурцами. грунт, обработанный силикатом натрия.Для поддержания относительно стерильной рабочей среды все горшки и инструменты стерилизовали.

Сеянцы огурца с двумя семядолями пересаживали в горшки (диаметром 16 см, высотой 14 см) с 1 кг подготовленной почвы. Было три повтора для каждой обработки и 33 горшка на повтор, включая 27 горшков для инокуляции FOC и шесть горшков для измерения сухой биомассы проростков огурцов. Затем проростки выдерживали в теплице (28 ° C днем ​​/ 18 ° C ночью, относительная влажность 60–80%, 16 часов света / 8 часов темноты).Все горшки были расставлены случайным образом. Эти сеянцы поливали стерильной водой три раза в неделю, и влажность почвы поддерживалась примерно на уровне 50% от ее водоудерживающей способности.

Инокуляция ФОС и измерение активности ферментов, связанных с защитой, и индекс болезни фузариозным увяданием

Через семь дней после пересадки саженцы огурцов из эксперимента с обратной связью растение-почва инокулировали FOC, как описано выше. Затем образцы корней проростков огурца из трех растений в каждой повторности собирали через 0, 3, 6 и 9 дней после инокуляции FOC.Во время отбора пробы корней хранили в жидком азоте и переносили при -80 ° C до дальнейшего анализа.

Активность супероксиддисмутазы

(SOD, EC1.15.1.1) измеряли методом нитросинего тетразолия (NBT) при 560 нм путем расчета фотовосстановления NBT (Beauchamp and Fridovich, 1971). Реакцию инициировали, помещая трубки под две люминесцентные лампы мощностью 15 Вт на 10 мин. Активность пероксидазы (POD, EC1.11.1.7) определяли, как описано Bernt et al. (1974), а одна единица активности фермента была определена как количество фермента, необходимое для увеличения поглощения на одну единицу в минуту.Активность фенилаланинаммиаклиазы (PAL, EC4.3.1.24) определяли спектрофотометрически, определяя продукцию транс -коричной кислоты из L -фенилаланина при 290 нм (Mozzetti et al., 1995). Активность PAL выражали в наномолях в минуту на мг белка. Активность β-1,3-глюканазы (GLU, EC3.2.1.6) определяли, как описано Lever (1972). Поглощение продукта, высвобождаемого GLU, измеряли при 540 нм, и активность GLU выражали в единицах поглощения в минуту на мг белка.

Через 15 дней после инокуляции FOC степень тяжести заболевания фузариозным увяданием измеряли путем регистрации 15 проростков на повтор каждой обработки, как описано выше.

Измерение сухой биомассы растений

Через 10 и 20 дней после пересадки собирали по три саженца огурца на повторность эксперимента с обратной связью растение – почва. Сухой вес проростков огурца измеряли после сушки в печи до постоянного веса при 70 ° C.

Влияние силиката натрия на рост ФОС и Streptomyces DHV3-2

In Vitro Эксперимент
На среде PDA было получено

конидий FOC, а на синтетической агаризованной среде Гаузе - спор Streptomyces DHV3-2, антагониста FOC.Затем FOC и Streptomyces DHV3-2 инокулировали в декстрозу картофеля и синтетическую жидкую среду Гаузе в колбах объемом 250 мл соответственно и инкубировали в течение 7 дней при 28 ° C со встряхиванием при 120 об / мин.

Поскольку рост микроорганизмов был чувствителен к pH (Bi et al., 2006), силикат натрия применялся при двух условиях pH: (1) pH раствора силиката натрия доведен до 6,32 с помощью 0,1 M HCl и (2) pH раствора силиката натрия не доведен (pH 9,85). Картофельная декстроза и синтетическая жидкая среда Гаузе, содержащая 0.Готовили 2 мМ силиката натрия. Между тем, в качестве контроля использовали стерилизованную воду (pH 6,32). Затем влияние силиката натрия на FOC и Streptomyces DHV3-2 было испытано в следующих условиях: (1) FOC в жидкой среде с декстрозой картофеля, (2) Streptomyces DHV3-2 в синтетической жидкой среде Gause, (3) как FOC, так и Streptomyces DHV3-2 в жидкой среде с декстрозой картофеля и (4) как FOC, так и Streptomyces DHV3-2 в синтетической жидкой среде Гаузе.Конечные концентрации как FOC, так и Streptomyces DHV3-2 составляли 10 4 КОЕ мл -1 . Количество FOC и Streptomyces DHV3-2 подсчитывали с помощью гемоцитометра в каждой среде через 3 дня после инокуляции. Было три повтора для каждой обработки и пять флаконов на повтор.

Эксперимент с микрокосмом в почве

Почвы, взятые из открытого грунта, сушили при комнатной температуре в течение 4–5 дней, а затем просеивали (2 мм) и автоклавировали, как описано выше.Десять миллилитров 10 3 CFU мл -1 FOC или Streptomyces DHV3-2 инокулировали в 100 г почвы по сухому весу, которые помещали в 200-миллилитровые банки. Содержание влаги в почве поддерживалось на уровне 60% от ее водоудерживающей способности. Эти сосуды инкубировали при 28 ° C в темноте в течение 14 дней, чтобы обеспечить стабильные уровни содержания FOC и Streptomyces DHV3-2 (данные не показаны). Затем эти сосуды обрабатывали 10 мл 2,0 мМ раствора силиката натрия. Между тем, стерилизованная вода (pH 6.32) использовался в качестве контроля. Через семь и четырнадцать дней после внесения силиката натрия содержание FOC и Streptomyces DHV3-2 в почве измеряли с использованием метода подсчета на чашках со средой Komada и средой Gao 1 соответственно. Было три повтора для каждой обработки и пять сосудов на повтор.

Статистический анализ

Для сопоставимой оценки микробного разнообразия между образцами для последующего анализа использовался нормализованный набор данных. В нормализованных данных случайным образом было выбрано наименьшее количество последовательностей во всех образцах (43 748 для бактерий и 52 108 для грибов).Индексы альфа-разнообразия (индексы ACE, Chao1, Шеннона и Симпсона) были рассчитаны с помощью «веганского» пакета в «R» (R Core Team, 2017). Для бета-разнообразия был проведен анализ основных координат (PCoA) для определения различий в структурах микробных сообществ на основе расстояний Брея-Кертиса. Анализ сходства (ANOSIM) с расстоянием Брея – Кертиса и 999 перестановками был проведен для проверки различий в составе микробного сообщества. Тепловая карта использовалась для отображения относительной численности доминирующих классифицированных бактерий (средняя относительная численность> 0.5%) и грибов (средняя относительная численность> 0,3%) родов. Относительное количество микробных таксонов было проверено на различия между обработками с использованием непараметрического теста Краскела-Уоллиса и теста Данна для апостериорных сравнений на уровне вероятности 0,05 с пакетом PMCMR в R (R Core Team, 2017 ).

Данные были проанализированы с помощью дисперсионного анализа (ANOVA). Для данных индекса заболевания фузариозным увяданием из эксперимента с горшком, численности FOC и Streptomyces DHV3-2 из эксперимента с микрокосмом, среднее сравнение между обработками было выполнено на основе теста Стьюдента t при 0.05 уровень вероятности; для других данных, среднее сравнение между обработками проводилось на основе теста достоверной значимой разницы Тьюки (HSD) с уровнем вероятности 0,05 с помощью программного обеспечения SAS (версия 8.0, SAS Institute, Кэри, Северная Каролина, США).

Результаты

Индекс роста рассады огурцов и болезни фузариозом

Без инокуляции FOC, сухой вес проростков огурцов был значительно увеличен экзогенным силикатом натрия через 20 и 30 дней ( P <0.05) (Рисунок 1A). После 21 дня инокуляции FOC индекс болезни фузариозного увядания проростков огурца был значительно снижен экзогенным силикатом натрия ( P <0,05) (рис. 1B).

РИСУНОК 1. Влияние силиката натрия на рост проростков огурцов (A) и индекс болезни фузариозного увядания (B) . CSi и C представляют собой почву для выращивания огурцов, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно. Звездочки указывают на значительную разницу между обработками при 0.05 уровень вероятности (тест Стьюдента t ).

Обилие почвенных бактерий и грибков

В голой почве силикат натрия значительно увеличивал численность почвенных бактерий и грибов (Рисунки 2A, B, P <0,05), но не влиял на соотношение бактерий и грибов (Рисунок 2C). В почве, выращиваемой огурцами, силикат натрия значительно увеличивал численность сообщества почвенных бактерий, но уменьшал численность сообщества почвенных грибов, и, таким образом, увеличивал соотношение бактерий к грибам (рис.2) ( P <0.05).

РИСУНОК 2. Почвенные бактерии (A) и грибки (B) численность сообществ и соотношение бактерий и грибов (C) , как определено с помощью ПЦР в реальном времени. BSi и B представляют собой голую почву, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно. CSi и C представляют собой почву для выращивания огурцов, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно. Значения с разными буквами значительно различаются на уровне вероятности 0,05 (тест HSD в Турции).

Состав и структура бактериального сообщества почвы

В голой почве обработка силикатом натрия имела большее количество наблюдаемых OTU, индексов ACE, Chao, Shannon и Inverse Simpson бактериального сообщества, чем обработка без силиката натрия ( P <0,05) (рис. 3A). Однако в почве, выращиваемой огурцом, силикат натрия не оказал значительного влияния на эти показатели разнообразия бактериального сообщества. Анализ PCoA на уровне OTU разделял четыре лечения друг от друга (рис. 4A), и разница была статистически значимой (ANOSIM, R = 0.873, P = 0,001).

РИСУНОК 3. Почвенные бактерии (A) и грибки (B) индексы разнообразия сообщества, определенные с помощью секвенирования Illumina Miseq. OTU были выделены с 97% сходством. Количество OTU (количество OTU), индексы ACE, Chao, Shannon и Inverse Simpson бактериального и грибкового сообществ рассчитывали исходя из 43 748 бактериальных и 52 108 грибковых последовательностей на образец, соответственно. BSi и B представляют собой голую почву, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно.CSi и C представляют собой почву для выращивания огурцов, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно. Значения с разными буквами значительно различаются на уровне вероятности 0,05 (тест HSD в Турции).

РИСУНОК 4. Анализ основных координат (PCoA) сообществ почвенных бактерий (A) и грибов (C) и относительная численность основных классов почвенных бактерий (B) и грибов (D) . OTU были выделены с 97% сходством.Графики PCoA были основаны на расстояниях Брея – Кертиса на уровне OTU. Как для бактериального, так и для грибного сообществ были показаны классы со средней относительной численностью> 0,5%. BSi и B представляют собой голую почву, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно. CSi и C представляют собой почву для выращивания огурцов, обработанную силикатом натрия и без него, соответственно.

На уровне типа Proteobacteria , Actinobacteria и Acidobacteria были доминирующими типами (средняя относительная численность> 10%) во всех образцах (дополнительный рисунок S1A). Актинобактерии , Alphaproteobacteria и Acidobacteria были тремя главными классами во всех образцах, и на них приходилось около 47,93% от общей бактериальной последовательности (рис. 4B). В голой почве силикат натрия увеличивал относительную численность бактерий типа Firmicutes , классов бактерий , Clostridia , Bacilli и Thermomicrobia ( P <0,05). В почве, выращиваемой огурцами, силикат натрия увеличивал относительную численность бактериального типа Gemmatimonadetes и бактериального класса Cyanobacteria , но уменьшал относительную численность типа Firmicutes , классов Anaerolineae , Clostridia acilli и , Термомикробия ( P <0.05).

На уровне рода во всех образцах было обнаружено более 530 бактериальных таксонов (данные не показаны). В голой почве силикат натрия увеличивал относительную численность видов Pseudarthrobacter , Microlunatus и Streptomyces spp., Но снижал относительную численность видов Nocardioides . ( P <0,05) (дополнительный рисунок S2A). В почве, где выращивают огурцы, силикат натрия увеличивал относительную численность Gemmatimonas , Rhizomicrobium и Rhodanobacter spp., но снизила относительную численность Pseudarthrobacter и Microlunatus spp. ( P <0,05).

Состав и структура почвенного грибкового сообщества

В голой почве обработка силикатом натрия имела большее количество наблюдаемых OTU, индексов ACE, Чао, Шеннона и обратного Симпсона грибного сообщества, чем обработка без силиката натрия ( P <0,05) (Рисунок 3B). Однако в почве, где выращивали огурцы, силикат натрия оказывал на эти показатели противоположное действие.Анализ PCoA, примененный для визуализации различий между образцами, показал четкое разделение между обработками (рис. 4C). ANOSIM также продемонстрировал, что сообщества грибов значительно различались между обработками ( R = 0,982, P = 0,001).

На уровне филума во всех образцах преобладали Ascomycota , Zygomycota и Basidiomycota , и на них приходилось около 95,06% от общей последовательности грибов (дополнительный рисунок S1B).В голой почве силикат натрия увеличивал относительную численность Ascomycota и Basidiomycota и уменьшал относительную численность Zygomycota ( P <0,05). В почве, где выращивали огурцы, силикат натрия увеличивал относительную численность Basidiomycota и уменьшал относительную численность Ascomycota ( P <0,05).

На уровне класса Sordariomycetes и Zygomycetes были двумя верхними классами во всех выборках, и их было 70.05% грибковых последовательностей (рис. 4D). В голой почве силикат натрия увеличивал относительную численность Sordariomycetes , Tremellomycetes , Agaricomycetes , Pezizomycetes , Eurotiomycetes и Ascomycota Incertae 0006, а относительная численность оседающих грибов 0006 и Ascomycota Incertae 0006, а также ( P <0,05). В почве, где выращивают огурцы, силикат натрия увеличивал относительную численность Agaricomycetes , Pezizomycetes и Ascomycota Incertae sedis и уменьшал относительную численность Sordariomycetes и Dothideomycetes (.05).

На уровне рода было обнаружено более 410 таксонов грибов (данные не показаны). В голой почве силикат натрия увеличил относительную численность Chaetomium , Gibellulopsis , Cryptococcus , Guehomyces , Kernia , Acremonium , Aspergillus , Aspergillus Cladseortium и . но снизила относительную численность Mortierella , Humicola , Stagonosporopsis , Nectria , Phaeomycocentrospora , Preussia и Exophiala spp.( P <0,05) (дополнительный рисунок S2B). В почве, где выращивают огурцы, силикат натрия увеличивал относительную численность видов Gibberella , Fusarium , Guehomyces , Aspergillus , Athelopsis и Pseudeurotium Pseudeurotium Pseudeurotium Pseudeurotium 0005, но уменьшал относительное количество Ilyonectria , Acremonium , Myrothecium , Stagonosporopsis , Metarhizium , Phaeomycocentrospora , Preussia , Cephaliophora 000 Cercophora , и( P <0,05).

Влияние биоты почвы на рост проростков огурцов и устойчивость к фузариозу

Сухая масса сеянцев, выращенных в фоновой почве, смешанной с голой почвой, обработанной силикатом натрия, была значительно выше, чем у сеянцев, выращенных в фоновой почве, смешанной с голой почвой, обработанной без силиката натрия ( P <0,05) (Рисунок 5A). Между тем, сухой вес проростков, выращенных в фоновой почве, смешанной с почвой для выращивания огурцов, обработанной силикатом натрия, был значительно выше, чем у проростков, выращенных в фоновой почве, смешанной с почвой для выращивания огурцов, обработанной без силиката натрия ( P <0.05).

РИСУНОК 5. Эффекты обратной связи изменений в почвенной биоте, вызванные силикатом натрия, на рост проростков огурцов (A) и индекс болезни фузариозного увядания (B) . 6% B и 6% BSi представляют собой стерилизованную почву открытого поля, смешанную с 6% (масса / масса) голой почвы, обработанной без силиката натрия и с добавлением силиката натрия, соответственно. 6% C и 6% CSi представляют собой стерилизованную почву открытого поля, смешанную с 6% (массой / массой) почвы, выращенной на огурцах, обработанной без силиката натрия и с добавлением силиката натрия соответственно.Значения с разными буквами значительно различаются на уровне вероятности 0,05 (тест HSD в Турции).

Ростки огурца Индекс заболевания фузариозным увяданием был сходным при обработке фоновой почвы, смешанной с голой почвой, обработанной силикатом натрия и без него (рис. 5B). Однако фоновая почва, смешанная с почвой, выращенной на огурцах, обработанной силикатом натрия, имела значительно более низкий индекс заболевания, чем почва, смешанная с почвой, выращенной на огурцах, обработанной без силиката натрия ( P <0.05).

Перед инокуляцией FOC все обработки имели сходную активность SOD, POD, PAL и GLU в корнях проростков огурца (Рисунок 6). Активность SOD, PAL и GLU через 3, 6, 9 дней после инокуляции FOC (Рисунки 6A, C, D), и активность POD через 6 и 9 дней после инокуляции FOC (фигура 6B) была выше в фоновой почве, смешанной с почвой, выращенной на огурцах, обработанной силикатом натрия, чем в почве, обработанной без силиката натрия ( P < 0,05). Однако фоновые почвы, смешанные с голой почвой, обработанной силикатом натрия и без него, имели сходную активность этих ферментов (Рисунок 6).

РИСУНОК 6. Эффекты обратной связи изменений почвенной биоты, вызванные силикатом натрия, на активность корня проростков огурцов SOD (A) , POD (B) , PAL (C) и GLU (D) . , 6% B и 6% BSi представляют собой стерилизованную почву открытого поля, смешанную с 6% (масса / масса) голой почвы, обработанной без силиката натрия и с добавлением силиката натрия, соответственно. 6% C и 6% CSi представляют собой стерилизованную почву открытого поля, смешанную с 6% (массой / массой) почвы, выращенной на огурцах, обработанной без силиката натрия и с добавлением силиката натрия соответственно.Значения с разными буквами значительно различаются на уровне вероятности 0,05 (тест HSD в Турции).

Влияние силиката натрия на рост ФОС и Streptomyces DHV3-2

Эксперименты in vitro показали, что при выращивании в одиночку количество спор FOC и Streptomyces DHV3-2 значительно снижалось за счет силиката натрия (pH не регулируется) ( P <0,05) (Рисунок 7). Однако силикат натрия с отрегулированным pH не влияет на количество спор FOC или Streptomyces DHV3-2.

,

Как распознать и лечить распространенные болезни огурца

Почему мои огурцы увядают?

Вянут ли листья, несмотря на постоянный полив? Вы замечаете коричневые, белые или желтые пятна на листьях или огурцах? Ваше растение огурца может быть инфицировано бактериальными, вирусными и / или грибковыми патогенами. Больные растения могут не давать столько фруктов (если таковые имеются), а любые фрукты, произведенные и , могут быть непривлекательными или съедобными. В этой статье мы обсудим наиболее распространенные болезни огурца, их причины, а также способы их лечения и профилактики.

1. Альтернариозная болезнь листьев

Причина

Грибок ( Alternaria cucumerina )

Это заболевание чаще поражает дыни, но может поражать и огурцы. Споры грибов могут переноситься ветром или распространяться через загрязненную почву и воду. Влажные и теплые условия благоприятствуют заболеванию. Грибок может выжить зимой в растительных остатках, чтобы весной снова атаковать растения.

Симптомы

Неправильные коричневые пятна на листьях, иногда с желтыми краями.

Заболевание обычно поражает зрелые листья. Сначала вы можете увидеть небольшие коричневые пятна. Эти коричневые пятна могут приобретать неправильную форму с желтым ореолом. Вскоре после этого листья становятся коричневыми, вянут и умирают, подвергая плоды воздействию прямых солнечных лучей, которые могут их ошпарить.

Лечение

Фунгициды - коммерческие или самодельные.

  • Единственный способ лечения грибковых заболеваний - фунгициды. В вашем местном питомнике продается множество брендов, но учтите, что фунгициды могут сделать плоды несъедобными.
  • Вы также можете опрыскать самодельные фунгициды, приготовленные из смеси мыльной воды, пищевой соды и уксуса. Некоторые органические садоводы также выбирают фунгициды для меди.
  • Если поражены только несколько частей растения, срежьте и удалите эти части, чтобы предотвратить распространение грибка.
  • Если растение сильно заражено, возможно, вам придется удалить все растение, обработать или заменить почву и начать все сначала.

2. Антракноз

Причина

Грибок ( Colletotrichum orbiculare )

Другое грибковое заболевание, антракноз, наиболее распространено во влажных и теплых условиях.Регионы с высокой влажностью, такие как южные и среднеатлантические штаты, очень восприимчивы к грибковым заболеваниям растений.

Гриб зимует в опавших виноградных лозах, листьях и других растительных остатках, выпуская весной споры для заражения новых растений. Для прорастания спорам (конидиям) необходима влажность и умеренная температура.

Симптомы

Желтые, пропитанные водой круглые пятна на листьях и плодах с краями от темно-коричневого до черного.

Вы можете увидеть круглые желтые пятна на листьях, которые сначала маленькие, но увеличиваются по мере развития болезни.Пятна на плодах могут казаться черными и впалыми с желатиновой субстанцией розового или лососевого цвета в центре. Это студенистое вещество представляет собой скопление грибковых спор - характерный признак антракноза.

Лечение

Фунгициды (Bravo или Benlate)

Опять же, обработанные фрукты несъедобны. Если большая часть вашего растения заражена, вам может потребоваться удалить все растение и начать с продезинфицированной почвы.

  • Распылите фунгициды в соответствии с инструкциями на этикетке продукта.В сезон дождей может потребоваться более частое нанесение.
  • Хлороталонил (Браво) и беномил (Бенлат) - популярные фунгициды, используемые для лечения антракноза.

3. Бактериальные пятна на листьях

Причина

Бактерии ( Pseudomonas syringae, Septoria cucurbitacearum, или Xanthomonas campestris )

Бактерии, вызывающие пятнистость на листьях, являются условно-патогенными и распространяются через поражения, вызванные укусами насекомых, и через семена, которые распространяют бактерии через контакт с водой.Однако они не так выносливы, как другие болезнетворные микроорганизмы. Хотя они могут перезимовать в растительных остатках, для процветания им нужны влажные и прохладные условия.

Симптомы

Маленькие коричневатые, угловатые или круглые пятна, иногда с желтыми краями, или черные пятна на листьях.

В зависимости от рода бактерий, поражающих ваше растение, симптомы могут незначительно отличаться, особенно на ранних стадиях. Инфекция Xanthomonas обычно вызывает коричневые пятна с желтыми краями, а инфекция Pseudomonas обычно вызывает красновато-коричневые пятна.В обоих случаях пятна быстро почернеют.

Пятна на листьях и плодах могут вызывать заражение других патогенов, особенно грибов. Это заболевание часто приводит к опаданию листьев, что делает плоды уязвимыми для солнечных лучей.

Лечение

В настоящее время не существует эффективного лечения бактериальной пятнистости листьев.

Профилактика по-прежнему считается лучшим методом борьбы.

  • Ищите жуков-огурцов ранней весной, когда погода начинает нагреваться.Обычно они выходят ранним вечером. Удалите их, как вы их видите.
  • Используйте укрытия для растений или укрытия для рядков, чтобы жуки и другие вредители не могли добраться до ваших растений.
  • Очистите свой сад от сорняков, которыми также питаются огурцы.
  • Посадите поблизости растения пижмы, кошачьей мяты и / или редиса, которые могут отпугнуть жуков-огурцов.
  • Распыление инсектицидов для борьбы с популяцией жуков.
  • Продезинфицируйте садовые инструменты, включая обувь, перчатки, лопаты и ножницы.
  • Обеспечьте хорошую циркуляцию воздуха, разместив растения на расстоянии друг от друга и приподняв их над почвой.

4. Бактериальное увядание

Причина

Бактерии ( Erwinia tracheiphila )

Бактериальное увядание передается в основном через жуков-огурцов (полосатых и пятнистых). Жук-огурец - маленькое насекомое желтого цвета с черными полосами или пятнами на спине. Он улавливает бактерии, питаясь инфицированными огурцами, и таким же образом переносит их на другие растения.Бактерии выживают зимой, живя в кишечнике своих жуков.

Симптомы

Желтые увядающие листья, которые, кажется, сохнут.

Изначально вы увидите только несколько пожелтевших, засыхающих и увядших листьев. В течение нескольких дней стебли и лозы также увянут, становясь желтыми и коричневыми. Один из способов узнать, является ли это бактериальное увядание, - это разрезать пораженный стебель и поместить его в стакан с водой. Присутствие молочного сока, сочащегося из пореза, означает бактериальное увядание.

Лечение

В настоящее время не существует эффективного лечения бактериального увядания.

Если поражена большая часть вашего растения, лучше всего удалить все растение из вашего сада. И снова профилактика - лучшее лечение. Убедитесь, что вы придерживаетесь санитарных правил и избегаете контакта стеблей, листьев и фруктов с водой и почвой.

5. Мозаика из огурцов

Причина

Вирус (вирус мозаики огурца)

Существует множество разновидностей вируса мозаики, названных в соответствии с фруктами, на которых они специализируются.Вирус распространяется через тлю, питающуюся растением, прививку зараженного растения к здоровому, а также через контакт с антисанитарными инструментами, сапогами и перчатками.

Симптомы

Белые, желтые или зеленые линии и узоры на листьях и фруктах.

Характерным признаком мозаики из огурцов является узор из пятен и / или линий на листьях или плодах. Рисунки могут быть белыми, желтыми или от светло-до темно-зеленого. Жилки листьев также могут стать очень отчетливыми и желтыми.

Растения могут не приносить столько плодов, а в противном случае плоды могут быть маленькими и деформированными. Листья также могут быть деформированы.

Как и у многих вирусных инфекций, симптомы не всегда могут быть заметны, что действительно затрудняет контроль. Высокие температуры, недоедание, хищничество насекомых и другие факторы стресса могут вызвать симптомы.

Лечение

В настоящее время не существует лечения, которое могло бы вылечить или предотвратить заражение вирусом мозаики огурца.

Профилактика - единственный способ предотвратить или избавиться от вирусной инфекции растений.

  • Удалите все зараженные растения и растительные материалы.
  • Часто дезинфицируйте садовые инструменты и одежду.
  • Посадить семена без вирусов.
  • Избегайте прививки - растения могут быть инфицированы и не проявлять симптомов.
  • Убирайте тлей и жуков сразу после их появления.
  • Распыляйте инсектициды, содержащие карбарил и метоксихлор, для борьбы с популяциями вредителей.
  • Используйте самодельный спрей из измельченного чеснока и мыльной воды, чтобы убить тлю.
  • Часто удаляйте сорняки и растительные остатки, так как и то и другое может быть рассадником многих болезней растений.

6. Ложная мучнистая роса

Причина

Грибок ( Pseudoperonospora cubensis )

Есть множество видов грибов, вызывающих это заболевание; некоторые специализируются на одном типе растений, в то время как другие могут заражать несколько видов растений.Ложная мучнистая роса предпочитает тень и влажность. Грибы не могут пережить чрезвычайно холодные зимы (например, на северо-востоке США), но в регионах с умеренным климатом они могут перезимовать в растительных остатках.

Симптомы

Светло-зеленые или желтые пятна на листьях, которые выглядят угловатыми.

Ложная мучнистая роса вызывает на листьях светло-зеленые или желтые угловатые пятна. Вы также найдете нечеткие темно-серые пятна с пурпурным оттенком (споры) на нижней стороне листьев - контрольный признак ложной мучнистой росы.По мере развития болезни листья засыхают, становятся коричневыми и опадают. Однако видимые симптомы не всегда совпадают.

Лечение

Опрыскать фунгицидами и удалить зараженные части растений

Лечение включает в себя комбинацию очистки пораженных частей растений и опрыскивания фунгицидами, такими как Orondis, Ranman, Curzate, Zing !, Zampro. Используйте фунгициды только в соответствии с указаниями на этикетках. Тяжелые инфекции могут потребовать удаления большей части или всего пораженного растения, чтобы предотвратить дальнейшее распространение.

7. Фузариоз Уилт

Причина

Грибок ( Fusarium oxysporum )

Фузариозное увядание обычно встречается на растениях томата и картофеля, но также встречается на растениях огурцов. Грибок поражает растения через корневую систему и постепенно ограничивает подачу воды к остальной части растения. В отличие от других грибковых заболеваний, грибок фузариоз предпочитает жаркую и сухую погоду. Он распространяется через насекомых, загрязненную воду и садовый инвентарь.

Симптомы

Листья внезапно желтеют или коричневеют и увядают

При выходе из строя водопроводной системы стебли, лозы и листья становятся желто-коричневыми и увядают. Обычно сначала поражаются более старые листья, а затем более молодые. Появление обезвоживания - симптом фузариозного увядания. Если вы регулярно поливаете, но заметили внезапное пожелтение листьев, у вашего растения может быть фузариозное увядание.

Обработка мент

Опрыскать фунгицидом около корневой системы и удалить пораженные части растений

Фунгициды, такие как Mycostop, могут быть эффективными против фузариозного увядания.Главное - убедиться, что лечение достигает корневой системы. Вы также должны удалить мертвые или умирающие части, чтобы предотвратить распространение болезни.

8. Мучнистая роса

Причина

Грибок ( Podosphaera xanthii или Erysiphe cichoracearum )

Мучнистая роса обычно поражает тыквы, в том числе огурцы. Это в основном вызывается Podosphaera xanthii и Erysiphe cichoracearum, с P.xanthii более распространен и более разрушителен. Грибы предпочитают теплые влажные условия, поэтому они обычно встречаются на растениях, выращиваемых в теплицах. Грибок может перезимовать в растительных остатках. Спорам не нужна влага для прорастания, и они могут распространяться на другие растения ветром, насекомыми, зараженной водой и садовым инвентарем.

Симптомы

Белые порошкообразные пятна или слои на листьях и стеблях

Как следует из названия, у пораженных растений появляются белые порошкообразные грибковые образования на стеблях и листьях, особенно на нижней стороне листьев.Нечеткие белые пятна или слои белого порошка на стеблевых листьях - характерный признак мучнистой росы. Фрукты тоже могут быть поражены, хотя это бывает редко.

Лечение

Распылить химические или органические фунгициды и удалить пораженные части растений.

Мучнистую росу лечить легче, чем другие грибковые заболевания. Обычный метод опрыскивания фунгицидом и удаления пораженных частей растений все еще применяется, но есть много вариантов органической обработки, которые не менее эффективны.

Вы можете попробовать некоторые из этих средств лечения мучнистой росы от органических соединений:

  1. Бикарбонат калия
  2. Молоко
  3. Масло нима
  4. Вингар
  5. Пищевая сода
  6. Чеснок
  7. Sulfer
  8. Фунгициды меди

9. Ризоктония брюшной гнили

Причина

Грибок ( Rhizoctonia solani )

Грибок поражает плоды напрямую, вызывая поражения и давая возможность другим патогенам заразиться.Гриб выживает в почве и предпочитает теплые влажные условия.

Симптомы

Коричневые пятна или поражения на плодах

Плоды при продолжительном контакте с почвой могут иметь коричневые, пропитанные водой пятна. Эти пятна могут разрастаться и распространяться глубоко в плод, становясь твердыми и покрытыми коркой по мере прогрессирования болезни.

Лечение

В настоящее время не существует эффективных средств лечения брюшной гнили Rhizoctonia

Профилактика - лучший способ лечения этого заболевания.Удалите пораженные части растений и продезинфицируйте садовые инструменты. В тяжелых случаях может потребоваться удалить все растение, обработать почву и начать все сначала. Вертикальная посадка во избежание контакта плодов с почвой может помочь предотвратить заражение в будущем.

10. Вертициллезное увядание

Причина

Грибок ( Verticillium dahliae )

Как и фузариозное увядание, грибы, вызывающие вертициллезное увядание, поражают растения через корневую систему, закупоривая сосудистую сеть растения.Им нужна влага и теплые температуры, чтобы заразить растения. Они могут выжить в почве, сорняках, растительных остатках за зиму. Споры распространяются через воду, насекомых и садовый инвентарь.

Симптомы

Неровные желтые пятна на листьях, которые могут стать коричневыми

Хотя название предполагает, что листва увядает, первыми признаками вертициллезного увядания на самом деле являются неровные желтые или коричневые пятна на листьях. Вертициллезное увядание часто путают с альтернариозным поражением листьев, но вокруг пятен нет ореолов.В отличие от фузариозного увядания, симптомы вертициллийного увядания начинаются у основания стебля и медленно продвигаются вверх по растению, причем симптомы редко достигают концов растения.

Лечение

Эффективных средств лечения вертициллезного увядания не существует.

Если вы подозреваете, что ваше растение заражено, лучше всего удалить пораженные части или все растение, чтобы предотвратить распространение грибка. Продезинфицируйте почву и садовый инвентарь.

Как предотвратить болезни огурцов

Использование фунгицидов и обрезка зараженных или умирающих частей растений может предотвратить распространение болезней.Применение пестицидов и домашних средств может контролировать вредителей и снизить вероятность заражения. Однако следует также использовать превентивные меры, такие как посев растений, контроль орошения и использование санитарных методов культивирования.

  1. Очищайте инструменты, обувь и перчатки после каждого использования.
  2. Продезинфицируйте горшки с отбеливателем, прежде чем использовать их повторно.
  3. Приобретите семена у надежного продавца.
  4. Регулярно удаляйте остатки растений.
  5. Соляризуйте почву перед посадкой.
  6. По возможности поливайте под землей.
  7. Создайте барьер между фруктами и почвой с помощью пластиковой мульчи.
  8. Чередуйте посевы в трехлетнем цикле.
  9. Выращивайте растения-компаньоны.
  10. Борьба с вредителями, такими как тля и полосатые огурцы.
,

Смотрите также

 
Copyright © - Теплицы и парники.
Содержание, карта.